Nature Communications volume 14, numero articolo: 5021 (2023) Citare questo articolo
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La traduzione delle proteine (PT) diminuisce con l'età negli invertebrati, nei roditori e nell'uomo. Si è ipotizzato che un PT elevato in giovane età sia benefico per la salute e che il PT finisca per diminuire come sottoprodotto passivo dell’invecchiamento. In Drosophila, dimostriamo che un aumento transitorio del PT durante la prima età adulta esercita impatti negativi di lunga durata sulle traiettorie di invecchiamento e sulla proteostasi in età avanzata. Il blocco dell’aumento del PT nei primi anni di vita migliora notevolmente la durata della vita/salute e previene l’aggregazione proteica correlata all’età, mentre l’induzione transitoria di un aumento del PT nei primi anni di vita nei ceppi di mosche a vita lunga abolisce i loro benefici in termini di longevità/proteostasi. L’aumento del PT nei primi anni di vita innesca la disfunzione proteostatica, silenzia le risposte allo stress e guida il declino funzionale legato all’età attraverso l’asse proteico di trasferimento ormonale-lipidico giovanile e la segnalazione della linea germinale. I nostri risultati suggeriscono che il PT viene soppresso in modo adattivo dopo la prima età adulta, alleviando il carico proteostatico in età avanzata, rallentando il declino funzionale legato all’età e migliorando la durata della vita. Il nostro lavoro fornisce un quadro teorico per comprendere come le dinamiche del PT nel corso della vita modellano le future traiettorie di invecchiamento.
La traduzione delle proteine (PT) è un processo cellulare essenziale che svolge un ruolo chiave nella crescita e nello sviluppo. Il PT si presenta a livelli elevati in giovane età, ma poi diminuisce precipitosamente, rimanendo basso durante tutta la mezza età in diverse specie animali, compreso l'uomo1,2,3,4,5,6. Ci si potrebbe aspettare che l’abbassamento del PT sia dannoso per la salute perché potrebbe portare a una carenza di proteine cellulari critiche e a un rallentamento del turnover proteico, consentendo l’accumulo di maggiori danni proteici. Tuttavia, è stato riportato che la riduzione permanente del PT rallenta il declino funzionale correlato all'invecchiamento, prolunga la durata della vita7,8,9,10 e migliora la senescenza cellulare e le malattie legate all'età11,12,13,14,15,16. Notiamo che, in tutte le specie animali, il PT è elevato nella prima età adulta1,2,3,4,5,6, il che implica che la soppressione del PT per tutta la vita avrebbe un impatto maggiore su questa finestra temporale critica per promuovere la longevità. Tuttavia, si ritiene generalmente che un PT elevato in giovane età sia benefico per la salute, mentre il PT finisce per diminuire nel tempo come sottoprodotto passivo dell’invecchiamento. Non è noto se ciò sia vero e come le fluttuazioni dinamiche del PT nel tempo incidano sull’invecchiamento. Abbiamo quindi modificato temporaneamente il PT in diverse fasi della vita nella Drosophila e abbiamo studiato il modo in cui queste modifiche hanno influenzato i fenotipi dell'invecchiamento.
Abbiamo scoperto che l’aumento transitorio del PT nella prima età adulta interrompe l’omeostasi proteica (proteostasi) in età avanzata, innesca l’aggregazione proteica legata all’età e determina il declino correlato all’età. I nostri risultati indicano anche che il rapido calo del PT dopo la prima età adulta è fondamentale per ridurre il carico proteostatico, rallentare il declino legato all’età e migliorare la durata della vita e della salute. Ciò suggerisce che il declino del PT correlato all’età, invece di essere semplicemente un sottoprodotto passivo dell’invecchiamento, può aiutare a promuovere un invecchiamento sano. Il nostro lavoro fornisce un quadro teorico per comprendere come le dinamiche PT nel corso della vita modellano le future traiettorie di invecchiamento e la rete di proteostasi.
In entrambi i sessi di Drosophila melanogaster, abbiamo osservato un aumento del PT durante la prima età adulta (Fig. 1a femmina, Fig. 1a supplementare maschio). Il PT è aumentato di circa 5 volte dal giorno 0 al giorno 2, diminuendo notevolmente in seguito. Questa osservazione era coerente utilizzando tre metodi indipendenti: incorporazione di 35S-metione (Fig. 1a, a sinistra), incorporazione di puromicina (Fig. 1a, al centro) e test reporter dell'mRNA della luciferasi in vitro (Fig. 1a, a destra). Quest'ultimo test misura la capacità dei lisati di tradurre l'mRNA17 della luciferasi introdotto. Il test della luciferasi è stato quindi utilizzato per verificare che un PT basso al giorno 0 non fosse un artefatto dell'alimentazione di substrati marcati alle mosche appena chiuse che possono utilizzare amminoacidi acquisiti dalle larve per il PT. Per studiare l'impatto dell'aumento del PT nella prima infanzia sui fenotipi dell'invecchiamento, abbiamo represso transitoriamente il PT nella prima età adulta (giorni 0-10) con un inibitore del PT ampiamente utilizzato (cicloesimide, CHX) (Fig. 1b). Abbiamo anche nutrito le mosche con CHX durante la tarda età adulta (giorni 40-50) e l'intera vita adulta (Fig. 1c). Coerentemente con studi precedenti, il trattamento con CHX durante l’intera vita adulta ha prolungato significativamente la durata della vita. Sorprendentemente, il trattamento con CHX solo per i primi 10 giorni di vita adulta ha prodotto un'estensione della durata di vita simile (Fig. 1d). Il trattamento con CHX in tarda età, tuttavia, non ha prolungato la durata della vita (Fig. 1d, Figura 1b supplementare). Questi risultati suggeriscono che l’aumento transitorio del PT nella prima età adulta può essere un importante fattore di invecchiamento.
w1118 (control) flies (Supplementary Fig. 2l). Also, for daGS > w1118, RU486 did not significantly affect egg production across ages (Supplementary Fig. 2h), indicating that RU486 itself did not delay the fertility peak or enhance reproductive fitness at old ages./p> UAS-S6KKQ flies after ± 200 µM RU486 (day 0–10), determined by puromycin incorporation normalized to Ponceau staining. n = 3/group; two-way ANOVA with Sidak post-hoc test. b Experimental scheme to transiently manipulate PT in different life stages; 200 µM RU486 given to daughterless-GeneSwitch GAL4 (daGS)>UAS-S6KKQ flies during early-adulthood (day 0–10), late-adulthood (day 40–50), or whole-adulthood. c In daGS > UAS-S6KKQ flies, early-adulthood (day 0–10) RU486 prolongs lifespan just like whole-adulthood RU486. Late-adulthood (day 40–50) RU486 does not alter lifespan. Each sex: n = 250/group; log-rank test. Puromycin incorporation in (d), chico homozygotes (female) and (e), chico heterozygotes (female) vs. wild-types. Absence of early-adulthood PT elevation in chico homozygotes and chico heterozygotes. n = 3/group; two-way ANOVA with Sidak post-hoc test. Male data in Supplementary Fig. 1. f Experimental scheme to induce the early-adulthood PT elevation in chico homozygotes; ± 200 µM RU486 given to chico1/chico1, UAS-S6KTE; tubulin-GeneSwitch (tubGS) GAL4 flies during early-adulthood (day 0–4). g Puromycin incorporation in chico1/chico1, UAS-S6KTE; tubGS GAL4 flies (±RU486, day 0–4). n = 3/group; two-way ANOVA with Sidak post-hoc test. h Early-adulthood S6KTE overexpression shortens lifespan and largely abolishes longevity of chico homozygotes. chico flies without early-adulthood S6KTE inductions vs. controls. Female: + 34.4%, male: + 37.7% (% change in median lifespan); chico flies with early-adulthood S6KTE inductions vs. controls. Female: + 6.3%, male: + 8.2%. Early-adulthood S6KTE overexpression does not significantly alter lifespan of +/+ controls. Each sex: n = 250/group; log-rank test. Data shown as mean ± SD. *p < 0.05, **p < 0.01, ***p < 0.001, ****p < 0.0001. Source data are provided as a Source Data file./p> UAS-S6KTE flies (±RU486 after day 2). n = 3/group; two-way ANOVA with Sidak correction. c Experimental scheme to block age-related decline in PT; 200 µM RU486, 200 µM RU486 + 1 µM CHX, or vehicle given to daughterless-GeneSwitch GAL4 (daGS)>UAS-S6KTE flies after day 2 (the PT peak). d S6KTE overexpression after day 2 shortens lifespan (: −41.8%, male: −45.6%; % change in median lifespan), but concurrent CHX treatment restores lifespan comparable to that of controls. Each sex: n = 250/group; log-rank test. e S6KTE overexpression after day 2 impairs locomotion at day 40. n = 200 female/group; two-way ANOVA with Sidak correction. f S6KTE overexpression after day 2 causes premature defects in gut-barrier integrity in Smurf assays. n = 250 female/group; two-way ANOVA with Sidak correction. g S6KTE overexpression after day 2 impairs cognition in olfaction aversion training at day 40. n = 200 female/group; Chi-square test. h (Left) representative images of eggs laid on vials at day 30 by daGS > UAS-S6KTE flies and daGS > w1118 (control) flies treated with ± RU486 after day 2. (Middle) S6KTE overexpression after day 2 causes faster age-related decline in egg production. n = 100/group; two-way ANOVA with Sidak correction. (Right) Area under the curve was calculated to determine lifetime egg production. S6KTE overexpression after day 2 impairs lifetime egg production. Two-tailed Student’s t-test. Data shown as mean ± SD. *p < 0.05, **p < 0.01, ***p < 0.001, ****p < 0.0001. male healthspan data in Supplementary Fig. 4. Source data are provided as a Source Data file./p> w1118; Control 2 = w1118 > UAS-NiPp1; CA ablated=Aug21-GAL4 > UAS-NiPp1. Each sex: n = 250/group; log-rank test. Proportional hazard analysis in Supplementary Fig. 6. Data shown as mean ± SD. *p < 0.05, **p < 0.01, ***p < 0.001, ****p < 0.0001. Source data are provided as a Source Data file./p> UAS-bam; Control 2 = NGT-GAL4 > w1118; GSC ablated=NGT-GAL4 > UAS-bam. n = 12/group; two-way ANOVA with Sidak post-hoc test. f Lifespan extension by early-adulthood (day 0–10) CHX is diminished with GSC ablation (female: +10.6% vs. + 46.7%, male: + 12.1% vs. + 30.8%). Each sex: n = 250/group; log-rank test. g Early-adulthood CHX improves lifespan in both fertile controls and sterile OvoD1 mutants. WT Wild-types. n = 250/group; log-rank test. h Proposed model describing mechanisms by which elevated early-adulthood PT triggers proteostatic dysfunction and drives aging. Data shown as mean ± SD. *p < 0.05, **p < 0.01, ***p < 0.001, ****p < 0.0001. Source data are provided as a Source Data file./p> 5 AA’s, with no MH + 1 charge states, with peptide probabilities of > 80% C.I., and with the number of peptides per protein ≥ 2. The protein probabilities were set to a > 99.0% C.I., and an FDR < 1.0. Scaffold incorporates the two most common methods for statistical validation of large proteome datasets, the false discovery rate (FDR) and protein probability74,75,76. Relative quantification across experiments was then performed via spectral counting77,78, and when relevant, spectral count abundances were then normalized between samples79./p>|0.8| combined with, 2) T-Test (two tail, unequal variance, cut off of p < 0.05), which are then sorted according to the highest statistical relevance in each comparison. For SAM82,83, whereby the weight value (W) is a statistically derived function that approaches significance as the distance between the means (μ1-μ2) for each group increases, and the SD (δ1-δ2) decreases using the formula, W = (μ1-μ2)/(δ1-δ2). For protein abundance ratios determined with N-SC’s, we set a 1.5–2.0 fold change as the threshold for significance, determined empirically by analyzing the inner-quartile data from the control experiments using ln-ln plots, where the Pierson’s correlation coefficient (R) is 0.98, and > 99% of the normalized intensities fell between the set fold change. In each case, all three tests (SAM, T-test, or fold change) have to pass in order to be considered significant./p>